elisa試劑盒操作方法、elisa測(cè)定出現(xiàn)問題及解決
雙抗體夾心法
1.包被:用0.05mph9.牰碳酸鹽包被緩沖液將抗體稀釋至蛋白質(zhì)含量為1~10μg/ml。在每個(gè)聚苯乙烯板的反應(yīng)孔中加0.1ml,4℃ 過夜。次日,棄去孔內(nèi)溶液,用洗滌緩沖液洗3次,每次3分鐘。(簡(jiǎn)稱洗滌,下同)。
2. 加樣:加一定稀釋的待檢樣品0.1ml于上述已包被之反應(yīng)孔中,置37℃ 孵育1小時(shí)。然后洗滌。(同時(shí)做空白孔,陰性對(duì)照孔及陽性對(duì)照孔)。
3. 加酶標(biāo)抗體:于各反應(yīng)孔中,加入新鮮稀釋的酶標(biāo)抗體(經(jīng)滴定后的稀釋度)0.1ml。37℃ 孵育0.5~1小時(shí),洗滌。
4. 加底物液顯色:于各反應(yīng)孔中加入臨時(shí)配制的tmb底物溶液0.1ml,37℃ 10~30分鐘。
5. 終止反應(yīng):于各反應(yīng)孔中加入2m硫酸0.05ml。
6. 結(jié)果判定:可于白色背景上,直接用肉眼觀察結(jié)果:反應(yīng)孔內(nèi)顏色越深,陽性程度越強(qiáng),陰性反應(yīng)為無色或極淺,依據(jù)所呈顏色的深淺,以“+”、“-”號(hào)表示。也可測(cè)od值:在elisa檢測(cè)儀上,于450nm(若以abts顯色,則410nm)處,以空白對(duì)照孔調(diào)零后測(cè)各孔o(hù)d值,若大于規(guī)定的陰性對(duì)照od值的2.1倍,即為陽性。
間接法
1.用包被緩沖液將已知抗原稀釋至1~10μg/ml,每孔加0.1ml,4℃過夜;
2.次日洗滌3次;
3.加一定稀釋的待檢樣品(未知抗體)0.1ml于上述已包被之反應(yīng)孔中,置37℃孵育1小時(shí),洗滌;
4.(同時(shí)做空白、陰性及陽性孔對(duì)照)于反應(yīng)孔中,加入新鮮稀釋的酶標(biāo)第二抗體(抗抗體)0.1ml;
5.37℃孵育35-60分鐘,洗滌;
6.’最后一遍用ddw洗滌。
其余步驟同“雙抗體夾心法”的4、5、6。
elisa測(cè)定中可能會(huì)出現(xiàn)的問題及可能的原因:
可能的原因(非試劑盒本身的原因)
1.弱陽性質(zhì)控樣本檢測(cè)不出 溫育的時(shí)間或溫度不夠;顯色反應(yīng)時(shí)間太短;所用配制緩沖液的蒸餾水有問題
2.測(cè)定的重復(fù)性差 (相同樣本兩次測(cè)定結(jié)果不一致) 這是典型的由測(cè)定操作引起的問題,包括
(1)加樣本及試劑量不準(zhǔn);孔間不一致;
(2)加樣過快,孔間發(fā)生污染;
(3)加錯(cuò)樣本;
(4)加樣本及試劑時(shí),加在孔壁上部非包被區(qū);
(5)不同批號(hào)試劑盒中組分混用;
(6)溫育時(shí)間、洗板、顯色時(shí)間不一致;
(7)孔內(nèi)污染雜物;
(8)酶標(biāo)儀濾光片不正確;
(9)血清標(biāo)本未凝固即加入,反應(yīng)孔內(nèi)出現(xiàn)纖維蛋白凝固或殘留血細(xì)胞,易出現(xiàn)假陽性反應(yīng)等。
3.白板 (陽性對(duì)照不顯色)
(1)漏加酶結(jié)合物;
(2)洗板液配制中出現(xiàn)問題,如量筒不干凈,含酶抑制物(如疊氮鈉)等。
(3)漏加顯色劑a或b;
(4)終止劑當(dāng)顯色劑使用。
4.全部板孔均有顯色
(1)洗板不干凈;
(2)顯色液變質(zhì);
(3)加底物的吸光受酶污染;
(4)洗板液受酶等污染
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